Vol. 49 Núm. 1 (2020)
Articulos de investigación

Relación entre variables ambientales y el crecimiento de Pteria colymbus (Mollusca Bivalvia: Pteriidae) en tres profundidades de cultivo

Luis Felipe Freites
Instituto Oceanográfico de Venezuela, Universidad de Oriente, Cumaná
Biografía
Miguel Guevara
Instituto Superior de Formación Docente Salomé Ureña (Isfodosu), Santo Domingo
Adrián Márquez
Escuela Superior Politécnica del Litoral (ESPOL), Centro Nacional de Acuicultura e Investigaciones Marinas (Cenaim), Guayaquil
Jormil Revilla
Escuela Superior Politécnica del Litoral (ESPOL), Centro Nacional de Acuicultura e Investigaciones Marinas (Cenaim), Guayaquil
Mariela Narváez
Instituto Oceanográfico de Venezuela, Universidad de Oriente, Cumaná
César Lodeiros
Grupo de Investigación en Biología y Cultivo de Moluscos, Escuela de Acuicultura y Pesquerías, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad Técnica de Manabí, Bahía de Caráquez, Manabí

Publicado 2020-07-16

Versiones

Palabras clave

  • bioincrustación,
  • ambiente,
  • profundidad,
  • ostra,
  • supervivencia

Cómo citar

1.
Freites LF, Guevara M, Márquez A, Revilla J, Narváez M, Lodeiros C. Relación entre variables ambientales y el crecimiento de Pteria colymbus (Mollusca Bivalvia: Pteriidae) en tres profundidades de cultivo. Bol. Investig. Mar. Costeras [Internet]. 16 de julio de 2020 [citado 24 de diciembre de 2024];49(1):9-26. Disponible en: https://boletin.invemar.org.co/ojs/index.php/boletin/article/view/857

Resumen

Estudiamos la influencia de las variables ambientales asociadas con tres profundidades de agua (2, 6 y 10 m) en el crecimiento de la concha, la masa seca de los tejidos blandos (MSTB) y la supervivencia de la ostra alada del Caribe Pteria colymbus (Roding, 1798). La clorofila a (Chl-a), el oxígeno disuelto, la materia orgánica en partículas (POM) y la temperatura se estudiaron a cada profundidad. Las ostras se colocaron en 135 cestas de plástico con cinco individuos en cada cesta. Se eligieron tres cestas en cada profundidad a intervalos mensuales para las mediciones de parámetros biométricos, bioincrustaciones y supervivencia. Al final del estudio, la masa seca de los individuos cultivados a 10 m fue significativamente menor (prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis KW, P < 0,05) con los valores más altos de MSTB correspondientes a las ostras cultivadas a 2 m de profundidad. El análisis del componente principal mostró una relación inversa (temperatura) y directa (Chl-a y POM) con la varianza observada en el MSTB. Teniendo en cuenta los resultados obtenidos en los rendimientos (crecimiento/supervivencia) de P. colymbus, recomendamos llevar a cabo su cultivo a profundidades de agua entre 2 y 6 m.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

  1. Acosta, V., C. Lodeiros, A. Prieto, M. Glem e Y Natera. 2009. Efecto de la profundidad sobre el crecimiento de los mejillones Perna perna y Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae) en cultivo suspendido en el golfo de Cariaco, Venezuela. Zoot. Trop., 27(3): 315-328.
  2. Aji, L.P. 2011. An overview of the method, management, problem, and their solution in the pearl oyster (Pinctada margaritifera) culture. J. Coastal Develop., 14(3): 181-190.
  3. Albuquerque, M.C.P., R. Alves, A. Zanandrea, J. Ferreira, C. Melo and A. Magalhães. 2012. Growth and survival of the pearl oyster Pteria hirundo (L., 1758) in an intermediate stage of culture in Santa Catarina, Brazil. Braz. J. Biol., 72: 175-180.
  4. Bayne, B. and R. Newell. 1983. Physiological energetics of marine mollusc: 407-515. In: Salenium, A. and K. Wilbur (Eds.). The Mollusca. Academics Press. New York.
  5. Beninger, P.G., A. Valdizan, P. Decottignies and B. Cognie. 2008. Impact of seston characteristics on qualitative particle selection sites and efficiencies in the pseudolamellibranch bivalve Crassostrea gigas. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 360: 9-14.
  6. Blicher, M.E., S. Rysgaard and M.K. Sejr. 2010. Seasonal growth variation in Chlamys islandica (Bivalvia) from sub-Arctic Greenland is linked to food availability and temperature. Mar. Ecol. Prog. Ser., 407: 71-86.
  7. Briceño, H.O. and J.N. Boyer. 2010. Climatic controls on phytoplankton biomass in a sub-tropical estuary, Florida Bay, USA. Estuar. Coasts, 33: 541-553.
  8. Chatfield, C. and A. Collins. 1980. Introduction to multivariate analysis. Chapman and Hall, London.
  9. Clarke, K. and R. Warwick. 2001. Change in marine communities: An approach to statistical analysis and interpretation. PRIMER-E Ltd., Plymouth. 82 p.
  10. Cranford, P.J. and J. Grant. 1990. Particle clearance and absorption of phytoplankton and detritus by the sea scallop Placopecten magellanicus (Gemelin). J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 137: 105-121.
  11. Cranford, P.J. and P.S. Hill. 1999. Seasonal variation in food utilization by the suspension-feeding bivalve mollusks Mytilus edulis and Placopecten magellanicus. Mar. Ecol. Prog. Ser., 190: 223-239.
  12. Díaz, J.M. y M. Puyana, 1994. Moluscos del Caribe colombiano. Un catálogo ilustrado. Colciencias Fundación Natura-INVEMAR. Presencia, Bogotá. 291 p.
  13. Frechette, M. and G. Daigle. 2002. Growth, survival and fluctuating asymmetry of Iceland scallops in a test of density-dependent growth in a natural bed. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 270: 73-91.
  14. Freites, L., A. Vélez y L. Hurtado. 1996. Crecimiento y producción secundaria de Euvola (Pecten) ziczac (L), en cultivo suspendido a tres profundidades. Bol. Inst. Oceanog. Venez., 35(1 y 2): 17-26.
  15. Freites, L., C. Lodeiros, N. Narváez, G. Estrella and J.M.F. Babarro, 2003. Growth and survival of the scallop Lyropecten (=Nodipecten) nodosus (L., 1758) in suspended culture in the Cariaco Gulf (Venezuela), during a non-upwelling period. Aquacult. Res., 34: 709-718.
  16. Freites, L., M. Rojas, A.W. Dale, A. Márquez, J. Revilla, C. Lodeiros and L. Tróccoli. 2017. Influence of environmental variables during seasonal upwelling on the growth of the winged oyster Pteria colymbus in a tropical ecosystem. Aquacult. Intern., 25: 1653-1666.
  17. García, M., C. Lodeiros, L. Freites, H. Córdova and J. Babarro. 2016. Comparative performance of the mussels Perna perna and Perna viridis, cultivate at four different depths. Braz. J. Oceanog., 64(3): 249-262.
  18. Gardner, J.P.A. and R.J. Thompson, 2001. Naturally low seston concentration and the net energy balance of the greenshell mussel (Perna canaliculus) at Island Bay, Cook Strait, New Zealand. NZ J. Mar. Freshwater Res., 35: 457-468.
  19. Gaytan-Mondragon, I., C. Cáceres-Martínez and M. Tobias-Sánchez. 1993. Growth of the pearl oysters Pinctada mazatlanica and Pteria sterna in different culture structures at La Paz Bay, Baja California Sur, Mexico. J. World Aquacult. Soc., 24(4): 541-546.
  20. Hawkins, A.J.S., J.G. Fang, P.L. Pascoe, J.H. Zhang, X.L. Zhang and M.Y. Zhu. 2001. Modelling short-term responsive adjustments in particle clearance rate among bivalve suspension-feeders: separate unimodal models of seston volume and composition in the scallop Chlamys farreri. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 261: 61-73.
  21. Kanjanachatree, K., K. Piyathamrongrut and N. Inthonjaroen. 2003. Effects of sea depths and sizes of winged pearl oysters (Pteria penguin) on pearl culture. Songklanakarin J. Sci. Techn., 25(5): 659-671.
  22. Kasai, A. and A. Nakata, 2005. Utilization of terrestrial organic matter by the bivalve Corbicula japonica estimated from stable isotope analysis. Fish. Sci., 71: 151-158.
  23. Lee, A.M., A. Williams and P.C. Southgate. 2008. Modelling and comparison of growth of the silverlip pearl oyster Pinctada maxima (Mollusca: Pteriidae) cultured in West Papua, Indonesia. Mar. Freshwater Res., 59: 22-31.
  24. Lodeiros C., B. Marín y A. Prieto. 1999a. Catálogo de moluscos de las costas nororientales de Venezuela. Clase Bivalvia. Apudons, Caracas. 103 p.
  25. Lodeiros, C. and J.H. Himmelman. 2000. Identification of factors affecting growth and survival of the tropical scallop Euvola (Pecten) ziczac in the golfo de Cariaco, Venezuela. Aquaculture, 182: 91-114.
  26. Lodeiros, C., D. Pico, A. Prieto, N. Narváez and A. Guerra. 2002. Growth and survival of the pearl oyster Pinctada imbricata (Roding 1758) in suspended and bottom culture in the golfo de Cariaco, Venezuela. Aquacult. Intern., 10: 327-339.
  27. Lodeiros, C., J. Rengel and J.H. Himmelman. 1999b. Growth of Pteria colymbus (Roding, 1798) in the golfo de Cariaco, Venezuela. J. Shellfish Res., 18: 155-158.
  28. Lodeiros, C., J. Rengel, L. Freites, F. Morales, and J.H. Himmelman. 1998. Growth and survival of the tropical scallop Lyropecten (Nodipecten) nodosus maintained in suspended culture at three depths. Aquaculture, 165: 41-50.
  29. Malavé, C., L. Freites, C. Lodeiros, J. Mendoza, L. Tróccoli and A.W. Dale. 2012. Annual recruitment, predation rates, and biocontrol of Linatella caudata (MOLLUSCA: GASTROPODA) in suspended enclosure culture of the pearl oyster Pinctada imbricata. Aquaculture, 354-355: 75-83.
  30. Márquez, B., C. Lodeiros, M. Jiménez y J.H. Himmelman. 2000. Disponibilidad de juveniles por captación natural de la ostra Pteria colymbus (Bivalvia: Pteriidae) en el golfo de Cariaco, Venezuela. Rev. Biol. Trop., 48(1): 151-158.
  31. Mengual, M., C. Lodeiros y A. Márquez. 2011. Crecimiento y supervivencia de la ostra alada Pteria colymbus (Röding 1798), en estructuras tubulares en la Bahía de Mochima, estado Sucre, Venezuela. Zootec. Trop., 29(2): 219-229.
  32. Müller-Karger, F., G.T. Taylor, Y. Astor, R.C. Thunnell, M.I. Scranton, R. Varela, L. Tróccoli, L. Lorenzoni, E. Montes, K.A. Fanning and C. Benitez-Nelson. 2013. The Cariaco Basin Ocean Time-Series. LOICZ Inprint, 1: 3-17.
  33. Müller-Karger, F., R. Aparicio and R. Castro. 1994. Mesoscale processes affecting phytoplankton abundance in the southern Caribbean Sea. Cont. Shelf Res., 14(2-3): 199-221.
  34. Navarro, J.M. and R.J. Thompson. 1995. Seasonal fluctuations in the size spectra, biochemical composition and nutritive value of the seston available to a suspension-feeding bivalve in a subarctic environment. Mar. Ecol. Prog. Ser., 125: 95-106.
  35. Pilditch, C.A. and J. Grant. 1999. Effect of temperature fluctuations and food supply on the growth and metabolism of juvenile sea scallops (Placopecten magellanicus). Mar. Biol.,134: 235-248.
  36. Prieto, A., O. Ramos, D. Arrieche, J. Villalba y C. Lodeiros. 2001. Producción secundaria e índice de condición en Arca zebra (Molusca: Bivalvia) del golfo de Cariaco, Venezuela. Rev. Biol. Trop., 49: 599-608.
  37. Román, G., M.J. Campos, C.P. Acosta and J. Cano. 1999. Growth of the queen scallop (Aequipecten opercularis) in suspended culture: influence of density and depth. Aquaculture, 178: 43-62.
  38. Saxby, S.A. 2002. A review of food availability, seawater characteristics, and bivalve growth performance at coastal culture sites in temperate and warm temperate regions of the world. Fish. Res. Rep. (W. Australia), 132: 1-42.
  39. Sims, N.A., 1994. Growth of wild and cultured black-lip pearl oysters, Pinctada margaritifera (L.) (Bivalvia, Pteriidae). Aquaculture, 122: 181-191.
  40. Smitasiri, R.R., J. Kajitwimat and P. Tantichodok. 1994. Growth of a winged oyster Pteria penguin suspended at different depths. Phuket Mar. Biol. Cent. Spec. Publ., 13: 213-216.
  41. Sokal, R.R. and F.J. Rohlf. 1979. Biometría. Principios y métodos estadísticos en la investigación biológica. Blume, Madrid. 832 p.
  42. Strickland, J. and T. Parsons. 1972. A practical handbook of seawater analysis. Bull. Fish. Res. Board Canada, 167, 310 p.
  43. Thompson, R. and B. MacDonald. 1991. Physiological integrations and energy partitioning. In: An international compendium of scallops’ biology and culture. Shumway, S. and P. Sandifer (Eds.). Workshops World Aquac. Soc., Baton Rouge, 14(1): 28-35.
  44. Tomaru, Y., Y. Kumatabara, Z. Kawabata and S. Nakona. 2002. Effect of water temperature and chlorophyll abundance on the shell growth of Japanese pearl oyster, Pinctada fucata martensii, in suspended culture at different depths and sites. Aquaculture Res., 33: 109-116.
  45. Urban, H.J. 2001. Reproductive strategies in tropical bivalves (Pteria colymbus, Pinctada imbricata and Pinna carnea): Temporal coupling of gonad production and spat abundance related to environmental variability. J. Shellfish Res., 20: 1127-1134.
  46. Urban, H.J. and J.M. Riascos. 2001. Estimating gonado-somatic indices in bivalves with fused gonads. J Shellfish Res., 21(1): 249-253.
  47. Velasco, L.A. and J. Barros. 2010. Spat collection and experimental culture of the Atlantic pearl oyster, Pinctada imbricata (Bivalvia: Pteriidae), under suspended conditions in the Caribbean. J. World Aquacult. Soc., 41: 281-297.
  48. Villarroel, E., E. Buitrago and C. Lodeiros. 2004. Identification of environmental factors affecting growth and survival of the tropical oyster Crassostrea rhizophorae in suspended culture in the golfo de Cariaco, Venezuela. Rev. Cient. Facult. Cienc. Veterin., Univ. Zulia, 14: 28-35.
  49. Yukihira, H., J.S. Lucas and D.W. Klumpp, 2006. The pearl oysters, Pinctada maxima and P. margaritifera, respond in different ways to culture in dissimilar environments. Aquaculture. 252: 208-224.
  50. Yukihira, H., J.S. Lucas and D.W. Klumpp. 2000. Comparative effects of temperature on suspension-feeding and energy budgets of the pearl oysters Pinctada margaritifera and P. maxima. Mar. Ecol. Prog. Ser., 195: 79-188.
  51. Zhang, J.H., J.G. Fang and X.M. Liang. 2010. Variations in retention efficiency of bivalves to different concentrations and organic content of suspended particles. Chin. J. Oceanol. Limn., 28: 10-17.
  52. Zhou Y. and J. Pan. 1999. Species, distribution, and damage of Cymatium in seawater pearl oyster culture zones of Hainan Island. Trop. Oceanog., 18(1): 83-89.