Publicado 2019-11-22
Palabras clave
- Bacterias marinas,
- Bacillus,
- Biopelículas,
- Sedimentos
Cómo citar
Resumen
La formación de biopelículas es un proceso importante para las comunidades bacterianas marinas debido a que este mecanismo favorece la adaptación a variaciones en las condiciones ambientales. El objetivo de este estudio fue evaluar la formación de biopelículas de las bacterias aisladas de sedimentos marinos en condiciones in vitro. Para esto se realizaron ensayos de cuantificación
de biopelículas usando dos métodos, cristal violeta y reducción del colorante XTT; además se evaluó la viabilidad de las bacterias mediante la tinción Live/Dead. Posteriormente las cepas evaluadas fueron identificadas usando el marcador 16S ARN. Los resultados mostraron
que los aislados pertenecen al género Bacillus todos en diferentes rangos fueron capaces de formar películas y se seleccionaron las cepas B. safensis 64181 y Bacillus sp 64186 las cuales indicaron mayor producción de esta. Los ensayos a diferentes temperaturas demostraron que para las cepas seleccionadas la mejor temperatura fue de 28°C. Además se realizó un cultivo mixto con estos aislados obteniendo como resultado diferencias en la densidad de la biopelícula y menos cambios en la actividad metabólica de la misma en los experimentos de variación de temperatura. A partir de los resultados podemos inferir que los consorcios bacterianos pueden favorecer la resistencia a variaciones ambientales en las biopelículas formadas por bacterias del género Bacillus.
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Citas
- Allesen‐Holm Marie, Mikkel Klausen, Jeremy S. Webb, Staffan Kje (Martínez-Díaz & Arévalo-Ferro, 2010)lleberg, Søren Molin, Michael Givskov, y Tim Tolker‐Nielsen. (2006). A characterization of DNA release in Pseudomonas aeruginosa cultures and biofilms. Molecular Microbiology, 59, 114-1128.
- Characklis, W. G., McFeters, G. A., y Marshall, K. C. (Eds.). (1990). Physiological ecology in biofilm systems. En Characklis WG, Marshall KC, eds. New York: John Wiley y Sons.
- Cynthia B. Whitchurch, Paula C. Ragas, y John S. Mattick. (2002). Extracellular DNA Required for Bacterial BioÞlm Formation. Science, 295, 1487.
- Díaz, A., J. Vivas, R. Puerta, L. Ahumedo, M. Arévalo, L. Cabrales, R. y Herrera, A. 2011. Biopelículas como expresión del mecanismo de quorum sensing: Una revisión. Avances en Periodoncia e Implantología Oral. Vol. 23, No. 3: 195-201.
- Donlan M. Rodney. (2002, septiembre). Biofilms: Microbial Life on Surfaces. Emerging Infectious Diseases journal, 8(9). Recuperado de https://wwwnc.cdc.gov/eid/article/8/9/02-0063_article
- Flemming, Hans-Curt, y Wingender, J. (2010). The Biofilm Matrix (Vol. 8). https://doi.org/10.1038/nrmicro2415
- Flemming, H.-C., Neu, T. R., y Wozniak, D. J. (2007). The EPS Matrix: The «House of Biofilm Cells». Journal of Bacteriology, 189(22), 7945-7947. https://doi.org/10.1128/JB.00858-07
- Hadfield, M., G. 2011. Biofilms and marine invertebrate larvae: what bacteria produce that larvae use to choose settlement sites. Annual review of marine science. Vol. 3: 453-470.
- Kolenbrander, E. Andersen, N. Blehert, S. Egland, G. Foster, S. Parmer, J. 2002. Communication among oral bacteria. Microbiology and Molecular Biology Review. Vol. 66: 486–505.
- Kuramitsu, K. He, X. Lux, R. Anderson, H. Shi, Y. 2007. Interspecies interactions within oral microbial communities. Microbiology and Molecular Review. Vol. 71: 653–670.
- Lau, S., C. Mak, K., K. Chen, F. y Qian, P., Y. 2002. Bioactivity of bacterial strains isolated from marine biofilms in Hong Kong waters for the induction of larval settlement in the marine polychaete Hydroides elegans. Marine Ecology Progress Series. Vol. 226: 301-310.
- Leriche V., P. S. (2000). Use of an Enzyme-Linked Lectinsorbent Assay To Monitor the Shift in Polysaccharide Composition in Bacterial Biofilms, 66(5). Recuperado de https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC101422/
- Martínez, S., y Acosta, A. (2016). Cambio temporal en la estructura de la comunidad coralina del área de santa marta - parque nacional natural tayrona (caribe colombiano). Bulletin of Marine and Coastal Research, 34. https://doi.org/10.25268/bimc.invemar.2005.34.0.239
- Martínez-Díaz, J., y Arévalo-Ferro, C. (2010). Evaluación de un bioensayo para medir la inhibición de biopelículas bacterianas. Universidad Nacional de Colombia, 1-103.
- Nazar, J. 2007. Biofilms bacterianos. Revista de otorrinolaringología y cirugía de cabeza y cuello. Vol. 67, No. 1: 161-172.
- Nowak, M. Kurnatowski, P. 2009. Biofilm caused by fungistructure, quorum sensing, morphogenetic changes, resistance to drugs. Wiad Parazytol. Vol. 55, No. 1:19-25.
- Rodriguez, R., A, Epifanio, C., E. 2000. Multiple cues for induction of metamorphosis in larvae of the common mud crab Panopeus herbstii. Marine Ecology. Vol. 195:221–229
- Stepanović , S., Vuković, D., Dakic, I., Savic , B., y Svabic-Vlahovic, M. (2000). Quantification of biofilm in microtiter plates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by staphylococci. J Microbiol Methods., 175-179.
- Surtherland. (2001). The biofilm matix- an immobilized but dynamic microbial environment. Trends in microbiology, 9(5), 2222-2227.